Инструкция по взятию крови у крс

  Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему — вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

  1. Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
  2. Для взятия крови животное не фиксируют.
  3. Хвост животного берут рукой в области средней трети и  медленно поднимают вверх.
  4. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5%  раствором йода.
  5. Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
  6. Иглу вводят под углом 90° до  упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1.     Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2.     Отсутствие фиксации животного;

3.     Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4.     Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5.     Минимизация осложнений и стресса у животных;

6.     Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7.     Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.  

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

  1. Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
  2. Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
  3. Необходимость фиксации животного.
  4. Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
  5. Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
  6. Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.  

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

 При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

 Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой  (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г  (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью  (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах 

Взятие крови для гематологических исследований

 Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-40С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

Лечебно-профилактические мероприятия в скотоводческой сфере требуют особого внимания и регулярности. Для этого выполняют периодический забор крови у КРС, чтобы проверить здоровье животного. От техники выполнения процедуры зависит качество исследования и будущая производительность племенного поголовья скота.

Как правильно подготовить животное

Взятие крови у КРС Кровь у коров берут на анализ для исследования ее биохимического состава. Это помогает исключить инфекционные болезни, подтвердить возможный диагноз ветеринара. Для этого нужна венозная кровь, которую проверяют на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы не травмировать сильно животное, важно правильно его подготовить к медицинской процедуре.

Обычно забор берут утром перед кормлением. После приема пищи нельзя брать анализ в течение 5 ч. Для серологического исследования берут по 7-10мл материала от КРС. Место для взятия пробы бреют электрической машинкой для стрижки коров для удаления волосяного покрова. Если нужно, то скотину предварительно фиксируют, а после участок нужно обработать антисептическим средством.

Иглы для забора материала должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не повредить противоположную стенку вены, не вызвать повреждения эритроцитов. Перед использованием иглы нужно прокипятить в дезинфекционном кипятильнике.

Методики, которые не требуют фиксации животного, легче переносятся коровами. Любой стресс скажется на количестве удоя, а это принесет финансовые потери. Нельзя брать кровь у самок за 3 недели до отела или в течение этого же времени после родов. Чтобы не было проблем в будущем, соблюдайте технику забора крови, выбирая менее травматичный вариант для животного и самый безопасный для ветеринара.

Все популярные техники забора крови у скота

Взять кровь на анализ у животного можно из хвостовой, яремной и молочной вен. Процедура имеет свои особенности для каждой из зон, но все зависит от скорости и местоположения кровотока.

Из молочной вены

Она находится на животе коровы с 2-х сторон, сбоку от вымени. Лучше всего ее видно у взрослых особей. Этот вариант менее предпочтителен, так как у животного эта зона считается очень чувствительной. Плюс ко всему эта вена залегает более глубоко, чем это кажется на первый взгляд. Корову придется фиксировать, удерживать с разных сторон. А если нет специального оборудования, то для забора крови придется привлекать несколько человек.

Процесс проходит таким образом после удаления волос и обработки антисептиком:

  1. Прощупывают пальцами венозный бугорок.
  2. Вводят плавно иглу шприца параллельно поверхности кожи.
  3. Берут биологический материал.

Такая методика может быть травматичной для крупного рогатого скота, что скажется на удоях. Обычно фермеры стараются использовать другие методики.

Из яремной вены

взятие крови из яремной вены Для этого используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, куда набирают биоматериал по стенке. Сосуд следует расположить к нижней трети шеи животного. Голову придется зафиксировать, что тоже является стрессом для коровы. Чтобы вызвать быстрое наполнение вены, уменьшить ее подвижность, кровеносный сосуд можно сдавить резиновым жгутом в середине шеи.

Техника следующая:

  • Зажимают большим пальцем сосуд на яремной вене.
  • Вводят иглу под острым углом в направлении 20–30° к поверхности кожи в направлении к голове. При этом глубина введения – 1 см.
  • Собирают нужное количество крови. Она должна стекать по стенке пробирки во избежание разрушения эритроцитов. При необходимости можно сразу смешивать жидкость с нужным количеством антикоагулянта.
  • Перед извлечением иглы из яремной вены снимают жгут, а вену пережимают пальцем выше места прокола.
  • После извлечения иглы место укола некоторое время сдавливают тампоном, чтобы не было гематомы.
  • После снова используем в обрабатываемой зоне дезинфицирующий раствор.

Материал в таких условиях считается нестерильным, а жидкость во время забора может разбрызгиваться.

К минусам этой методики можно отнести:

  • Большой риск распространения инфекции на ферме. Пострадают не только животные, но и люди. Это такие болезни как туберкулез, бруцеллез, лейкоз крупного рогатого скота.
  • Нужно фиксировать животное.
  • Будут осложнения после процедуры – гематома, абсцесс.
  • Стресс у скота, снижение удоев минимум на 5%.
  • Разбрызгивание крови, которая обязательно попадет на руки ветеринара, кормушку или др. объекты в хозяйстве.

В конце нужно добавить, что полученные пробы – нестерильные.

Из хвостовой вены

взятие крови из хвостовой вены Такой метод отличается высокой скоростью забора биологического материала. Животное в этом случае фиксировать не нужно, а сама процедура легко переносится КРС. Последние методики в заборе крови как раз нацелены на взятие материала из хвостовой вены у коров.

Как проходит процедура:

  1. Берем хвост коровы на середине длины, а после – поднимает его вверх.
  2. Дезинфицируем спиртом область между 2 и 5 позвонком, а также прилегающую к ним зону.
  3. Берем стерильную иглу или систему для забора крови в 1 руку, а в другой держим хвост.
  4. Иглу нужно вводить перпендикулярно к поверхности хвоста, а глубина введения должна быть от 0,5 до 1 см.
  5. Делаем забор биоматериала.

Методика исключает контакт ветеринара с биоматериалом животного, а это является самым большим преимуществом. Трудности в заборе крови в сосуде создает слабый кровоток в этой части тела скота, но вакуумные системы помогают решить эту проблему. В результате процедура выходит эффективной и максимально безопасной.

В чем плюсы вакуумных систем

Применение вакуумных технологий для получения анализа помогает выполнить процедуру КРС максимально быстро и безопасно. Эта методика отлично работает на хвостовой вене. Процесс никак не травмирует скот, убирает прямой контакт ветеринара и животного с биологическим материалом.

взятие крови вакумным способомОборудование состоит из иглы и шприца с контейнером. Диаметр иглы обычно составляет 0,9 мм, она снабжается клапаном, который блокирует вытекание крови, а это снижает вероятность появления осложнений. Корпус шприца сделан из прочного пластика, само приспособление играет роль транспортного контейнера. В этой же емкости легко выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Плюсы вакуумной системы:

  • Не нужно фиксировать скот.
  • Снижение стресса у животного.
  • Можно взять стерильную пробу.
  • Удобство использования, так как не нужно позже материал переливать в другую тару.
  • Нет прямого контакта ветеринара с биоматериалом.
  • Исключается риск разнесения инфекции среди поголовья скота.

Маркировка на таком изделии разрешает использование цветового кодирования, а это позволит сортировать полученные пробирки.

Какие могут быть ошибки

При выполнении обычной методики получения крови на анализ, например, из яремной вены скота, есть вероятность попадания материала на людей и окружающие вещи. Если скот заражен, то появляется риск расползания инфекции по ферме. При этом открытый способ отнимает много времени, требует определенной подготовки (минимум – фиксации животного), сноровки и предельной аккуратности.

Если нарушить нормы асептики и техники получения анализа у КРС, то готовый образец может не отвечать нужным требованиям. У коровы же могут появиться гематомы и абсцессы. Не нужно форсировать забор, так как произойдет частичный гемолиз кровяных клеток.

Как хранить пробу и сыворотку крови

Материал нужно поместить в холодильник при температуре +2…+4°С. Если придется длительное время хранить сыворотку, то нужна температура +20°С. Любое нарушение этих условий привлечет за собой погрешности в анализе. Неумелое встряхивание пробирок во время перемешивания их содержимого или в процессе транспортировки тоже вызывает гемолиз эритроцитов.

Сыворотку крови нужно направить на исследование в течение первых суток после взятия пробы, но не позже 3-го дня (в исключительных случаях). На каждой пробирке указывают номер, кличку животного, ФИО владельца коровы. Все пробы закрывают плотно стерильными пробками, ставят в вертикальное положение для пересылки. Зимой анализы нужно тщательно упаковать, чтобы при перевозке они не замерзли. Обязательно ветеринар, приглашенный на ферму для забора крови, готовит вместе с пробами сопроводительный документ в двух экземплярах.

  Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему — вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

  1. Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
  2. Для взятия крови животное не фиксируют.
  3. Хвост животного берут рукой в области средней трети и  медленно поднимают вверх.
  4. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5%  раствором йода.
  5. Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
  6. Иглу вводят под углом 90° до  упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1.     Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2.     Отсутствие фиксации животного;

3.     Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4.     Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5.     Минимизация осложнений и стресса у животных;

6.     Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7.     Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.  

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

  1. Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
  2. Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
  3. Необходимость фиксации животного.
  4. Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
  5. Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
  6. Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.  

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

 При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

 Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой  (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г  (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью  (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах 

Взятие крови для гематологических исследований

 Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-40С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему — вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

  1. Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
  2. Для взятия крови животное не фиксируют.
  3. Хвост животного берут рукой в области средней трети и  медленно поднимают вверх.
  4. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5%  раствором йода.
  5. Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
  6. Иглу вводят под углом 90° до  упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1.     Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2.     Отсутствие фиксации животного;

3.     Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4.     Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5.     Минимизация осложнений и стресса у животных;

6.     Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7.     Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.  

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

  1. Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
  2. Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
  3. Необходимость фиксации животного.
  4. Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
  5. Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
  6. Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.  

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

 При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

 Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой  (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г  (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью  (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах 

Взятие крови для гематологических исследований

 Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-40С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.


Download Article


Download Article

Blood samples obtained from cattle are very useful for a variety of means, from testing for disease to checking pregnancy status. The quick and relatively simple means of taking blood is low stress and almost painless for the animal. However, knowing where and how to place the needle to quickly get a sample is important. Your veterinarian can show you where and how to take a blood sample, though this article will also guide you in following the proper procedures for two locations with two different types of blood sampling.

Two key locations are used for taking blood samples: From the coccygeal vein of the tail-head, and the jugular vein of the neck. There are also two methods of blood sampling: With the classic needle and syringe, and exiting the contents of the syringe into a vaccutainer tube, and with a double-pointed needle that draws blood into a vaccutainer tube, no syringe required.

To make things simpler, the classic needle and syringe is coupled with obtaining a blood sample from the tail-head, and the double-pointed needle holder is coupled with taking blood from the jugular vein. You can use either blood-drawing method from either the tail-head or the neck.

  1. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 1

    1

    Order your blood test kit and have it shipped to you. The number of samples that need to be taken should be one per bovine. Thus, the number of tubes needed will depend on how many animals you need to draw blood from.

  2. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 2

    2

    Confine and restrain the animal. It makes taking blood much easier and safer for both you and the animal if the animal is confined to a head-gate or squeeze chute. For this method, a head-gate with a neck extender isn’t really necessary.

    Advertisement

  3. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 3

    3

    Raise the tail and locate the coccygeal blood vessels underneath the tail. The tail needs to be raised right up in the air so that its perpendicular to the ground. The blood vessel of choice is located under the tail, which is where you will be taking blood from.

    • Note though that the vessels actually form an upside-down V from either side of the anus up a couple inches the tail. Where the V ends and the vessels continue parallel to the length of the tail is where you should take your blood sample from.
  4. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 4

    4

    Clean the area to be sampled. Because the sample is being taken from under the tail, close vicinity to the anus, bacteria from feces could potentially contaminate the sample if the area is not swabbed with alcohol first. A cotton ball dipped in 70% rubbing alcohol will work, just by holding the cotton ball to the opening of the bottle and tipping the bottle nearly upside down to wet the ball. (You can also use a 4×4 gauze.) Rub, in an upward motion only away from the anal region, the area you will be inserting the needle into.

  5. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 5

    5

    Insert the needle directly into the vein. The needle needs to be carefully inserted perpendicular to the angle of the tail; but not all the way in.

    • It is easier to put the needle in perpendicular to the tail rather than try to put it in parallel because it may be more difficult to puncture the vein when the needle is at more of an angle to the vein than when it’s 90-degrees to that vein.
    • Use a short needle: an 1-inch, 18-gauge needle is good enough for this job. And as mentioned, only insert the needle slightly over half-way in, never all the way.
      • The syringe accompanying the needle should not be more than 5 cc; but, there’s nothing wrong with having a 10 cc syringe, just note that you don’t need to fill it up completely with blood.
  6. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 6

    6

    Draw slowly back on the plunger of the syringe. Allow 3 to 5 mL (or 3 to 5 cc) of blood to enter the syringe. Most labs only need a small amount of blood to do the test and to have some left over in case the lab technicians make a mistake.

  7. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 7

    7

    Remove the needle the same way you inserted it. Apply pressure to the area to stem excess bleeding with a gauze or cotton swab. Then lower the tail when bleeding appears to have stopped.

  8. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 8

    8

    Take a rubber-capped test tube (called a «vacutainer tube») and insert the needle into the top of the cap. The vacuum-sealed tube will vacate the contents of the syringe without you needing to apply pressure to the plunger. Remove the needle when all contents have been vacated.

  9. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 9

    9

    Label the tube. The vacutainer tube must be labelled with the identifying number and/or name of the animal, sample number (Sample #1, 2, 3, etc., or Sample A, B, C, etc.), and name of your farm.

  10. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 10

    10

    Put the tube back in its place. Usually the box that contained the kit has a built-in tray to place the vacutainer tubes in. Place the tubes in that box with the bubble wrap surrounding each tube to protect them.

  11. Advertisement

  1. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 11

    1

    Assemble the needles with the needle holder (optional). You must use a fresh blood-letting needle for every cow, for reasons that include you make sure each needle is sharp for a clean puncture into the vein, and so that you don’t risk contaminating the samples between animals. Assembling the needles just makes it easy for you to grab the next needle after disposing the last one just used.

    • The double-pointed needle holder is designed so that one needle is on the outside, as the «blood-letting» needle, and the other needle, pointing the opposite way, is housed inside a short open-ended tube that is wide enough to insert a vacutainer test tube while keeping your fingers safe.
  2. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 12

    2

    Ready the double-pointed needle with a clean needle for blood-drawing. Make sure you also have a needle inside the holder ready for the tube. Make sure you have the cap on the outside needle you will use to puncture the jugular vein.

  3. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 13

    3

    Restrain the animal. Just as in the method above, the animal must be restrained in a head-catch or squeeze chute for the safety of both the handler and the animal.

    • While the animal’s head is caught, use a rope halter to tie the animal’s head off to one side, exposing the side of the neck.
  4. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 14

    4

    Find the jugular furrow and «tap» the jugular vein. The groove beneath the muscle of the neck (which is the top half to two-thirds of a cow’s neck) is where the jugular vein can be felt. With the fingers pf one hand apply pressure to the jugular vein lower down on the neck, right below the biggest bulge of the neck muscle; with the other stroke the grove by starting from the start of the groove at the head and moving your hand downwards to almost your other hand. This will encourage the vein to pop out more, and make it easier for you to do the next step.

    • The jugular vein is actually quite large and especially noticeable when animals have their summer coat. You may even be able to see it pulsating if you look carefully.
  5. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 15

    5

    Put the blood-letting needle into the vein. Keeping the fingers of one of your hands on the lower part of the neck (where the deepest jugular groove is and ends, as indicated in the step above), insert the outside needle into the vein at an angle that is perpendicular to the slope of the neck, and only at half of the needle’s length.

    • Use a 1-inch 18-gauge needle for going into the vein.
    • Feel free to use your forefinger on the needle as a guide, though this is completely optional.
    • As in the method above, the reason to go perpendicular into the vein is so that it reduces the needle slipping and missing the vein completely. All needles are tapered at the end, not pointed like a spear. The greater the angle the needle was inserted (i.e., more parallel to the neck), the chance of the needle slipping and missing the vein completely increases.
    • You may put in the needle alone in first before attaching the needle holder, or puncture the vein while the blood-letting needle is already attached to the double-needle holder. Whatever you chose to do is optional, and your veterinarian may encourage the same.
  6. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 16

    6

    While the blood-letting needle remains in the vein, attach a vaccutainer tube to the needle on the inside of the double-needle holder (see step 1). Allow blood to drain into the tube until you have around 3 to 5 mL of blood.

    • Once the vaccutainer tube is attached to the needle unit it takes only a few seconds for the tube to get full. You must pay attention to the tube to make sure you remove it before it gets too full.
  7. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 17

    7

    Once you have obtained your sample, remove the vaccutainer tube from the needle-holder unit. Then remove the double-needle holder unit from the animal, pulling it out in the same direction you put it in.

  8. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 18

    8

    Apply pressure to stop the bleeding. Use gauze or a cotton swab to do so. Check about every 5 seconds to see if bleeding has stopped. It should only take 30 seconds or less for the area to stop bleeding.

  9. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 19

    9

    Cap the outside needle, and remove it into a biohazard disposal box. Obtain a fresh needle for the next animal, and keep it capped for now.

  10. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 20

    10

    Label the tube. Tube must be labelled with the identifying number and/or name of the animal, sample number (Sample #1, 2, 3, etc., or Sample A, B, C, etc.), and name of your farm.

  11. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 21

    11

    Place tube back in the box. The box that contained the blood-sampling kit has a built-in tray to place the vacutainer tubes in. Place the tubes in that box with the bubble wrap surrounding each tube to protect them.

  12. Image titled Take Blood Samples from Cattle Step 22

    12

    Repeat for other cattle. Release the animal and move on to the next animal that needs to have its blood collected.

  13. Advertisement

Ask a Question

200 characters left

Include your email address to get a message when this question is answered.

Submit

Advertisement

Video

  • Always label each and every tube after you do every animal. This way you keep track of which animals you got a sample from, and eliminates the risk of forgetting which cow, bull or heifer a mystery sample came from.

  • Use a fresh needle for each animal. This will eliminate risk of disease transfer if the same needle is used on multiple animals.

  • There is no need to be in a hurry to get blood samples. The animal may struggle a bit, so if you have to wait until they settle down, then do so.

    • The needle poking into the vein will cause the animal to startle a little. In some cases, some may over-react especially if they’re not used to being handled. Let them fight; they’ll calm down soon enough for you to get your sample.
    • The rope-halter will help keep the animal’s head restrained for getting blood from the neck. Tie their heads up far enough that they’re not going to struggle, but it’s also not going to put too much strain on their neck. The animal will tell you if you need to tighten up the slack or let a little slack off.

Show More Tips

Advertisement

  • Handle needles with care. You are not taking blood samples from yourself, but from your cattle, so avoid any means, accidental or otherwise, of poking yourself or even others who are working with you!

  • Do not drop the test tubes! Handle the tubes carefully to avoid damaging them. Once they are damaged they may leak or loose their efficacy and potentially be contaminated.

  • Animals not used to being handled can make it dangerous to take blood samples from, especially from the neck region. You may be better off taking samples from the tail-head instead, because lifting the tail up vertically will stretch the hamstrings preventing the animal from kicking out at you. The risk though is when you grab the tail to lift it and lower it after you’ve gotten your sample.

Advertisement

Things You’ll Need

  • One 1-inch 18-gauge needle per animal
  • One 5 or 10 mL syringe per animal
  • One vacutainer tube per animal
  • Head-gate or squeeze chute with head-gate
  • Double-pointed needle holder with a needle on outside and needle inside.
  • Biohazard box for needle disposal
  • A cow, bull, or heifer to take sample from
  • Wrappings to cushion tubes (absorbent newspaper, bubble-wrap, plastic foam-wrap, etc.)

References

About This Article

Thanks to all authors for creating a page that has been read 38,619 times.

Reader Success Stories

  • Maren

    «I am applying for a job as a blood sampler and this explained the process very well. Thanks.»

Did this article help you?

Get all the best how-tos!

Sign up for wikiHow’s weekly email newsletter

Subscribe

You’re all set!

Понравилась статья? Поделить с друзьями:
  • Детримакс форте таблетки инструкция по применению
  • Рабочая инструкция уборщика служебных помещений в рб 2021
  • Детская сухая микстура от кашля инструкция с какого возраста
  • Бетасерк инструкция отзывы от шума в ушах
  • Как дискредитировать сотрудника в глазах руководства